取人或动物体内(或胚胎)的组织,将其剪碎至1mm3的组织块,再采用的如下方法进行分离培养:
一、悬浮细胞的分离方法
1、将血液、羊水、胸水或腹水等悬液直接转至离心管中,1000rpm/分钟离心5分钟。
2、去掉上清,离心沉淀用无钙、镁的PBS清洗后1000rpm/分钟离心5分钟。此步重复两次。
3、用培养基重悬,调整适当细胞浓度后分瓶培养。
4、如选用悬液中某种细胞,可采用离心后的细胞分层液收获目的细胞。
二、实体组织材料的分离方法
(一)机械分散法
1、纤维成分很少的脑组织,部分胚胎组织,用剪刀剪碎至1mm3 的组织块。
2、用PBS清洗两次后
①用吸管吹打,分散组织细胞。
②或将已充分剪碎分散的组织放在注射器内(用九号针),使细胞通过针头压出。
③或在不锈钢纱网内用钝物(注射器钝端)压挤使细胞从网孔中压挤出。
3、收集细胞转入离心管中,1000rpm/分钟离心5分钟。
4、去上清,加入含血清的培养基,重悬后移至培养瓶中培养。
(二)消化分离法
1、酶消化分离法(过夜冷消化法)
①细胞间质较少的软组织,如肝、肾、甲状腺、羊膜、胚胎组织、上皮组织等,用Hanks液清洗组织三次,剪成碎块大小为4毫米左右。
②再用Hanks液洗2-3次以除去血球和脂肪组织。
③加入0.25%的胰蛋白酶,摇匀后放4℃过夜。
④次日再用Hanks液洗涤,弃去上清,共洗2-3次。
⑤加入少量含血清的培养基吹打分散,细胞计数,按适当的浓度分瓶培养。
2、非酶消化法(EDTA消化法)
①把组织块剪碎,呈1mm3 大小的组织块。
②将碎组织块在平皿中用无钙镁PBS洗2-3次。
③加入消化液(胰蛋白酶或胶原酶或EDTA)于37℃水浴中作用适当时间(中间可轻摇1~2次),若组织块膨松呈絮状可终止,若变化不大可更换一次消化液,继续消化直至膨松絮状为止。
④弃去上清,加入含有钙、镁离子的培养基中止消化反应,并洗涤2-3次后,加入完全培养基。
⑤用吸管吹打,使细胞充分散开后用纱网过滤后分瓶培养。