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质粒提取(二)

点击次数:  更新时间:2018/4/25 15:41:59  

质粒提取

三、质粒的纯化

  1. 1. 将之前提取好的质粒放入1.5ml离心管中,加入1/10体积的3mol/L 无菌乙酸钠溶液。

  2. 2. 加入2倍体积的无水乙醇,放置于-20℃沉淀4-6h或过夜。

  3. 3. 4℃,高速离心机14000rpm,离心20min.

  4. 4. 弃去上清,70%乙醇洗2次。

  5. 5. 空气干燥,可置超净工作台干燥。

  6. 6. 加200ul无菌水溶液干燥后所得沉淀,即为质粒溶液。

  7. 7. 紫外分光光度计测量质粒浓度和产量。

  8. 测量OD260OD280的值:质粒DNA浓度=OD260×50×稀释倍数(μg/mL)。

四、培养基配方

  1. 1.  LB液体培养基 100ml配方如下:

  2. 胰蛋白胨                1g

  3. 酵母提取物              0.5g

  4. NaCl                    1g

  5. DDW定容               100ml

  6. 2. LB固体培养基 100ml配方如下:

  7. 胰蛋白胨                1g

  8. 酵母提取物              0.5g

  9. NaCl                    1g

  10. 琼脂粉                  1.5g

  11. DDW定容               100ml

附录:

  1. 1 OD260和OD280的比值表示质粒的纯度。比值大于1.8,说明纯化产物的纯度达到了90%。纯化好的质粒可用于转染实验,一般纯化步骤在细胞间内进行,提取和纯化好的质粒可以之列用于细胞实验。

  2. 2 此方法用于小量DNA质粒的制备和提取,根据实验要求,选择不同载体可以克隆出所需质粒,提取和纯化步骤基本相同。其中关键步骤为内切酶的选用,可以参考PRIMER5等软件提供的内切酶筛选功能。