实验动物组织标本的制备实验
点击次数： 更新时间：2018/8/7 15:04:14
实验原理：
通常选用家兔、豚鼠、大白鼠或小白鼠等动物，禁食24 小时。击头致昏，以避免麻醉或失血对胃肠道机能的影响。立即打开腹腔，取出所需的胃、肠、胆囊等。去除附着的系膜或脂肪等组织。迅速放入充氧（或95%O2+5%CO2 ）保温（37 ℃）的营养液中，并以注射器用营养液将管腔内的食物残渣清洗干净。
1. 肠管标本的制备通常取十二指肠或回肠十二指肠的兴奋性和自动律性较高，呈现活跃的舒缩活动。回肠比较静息，其运动曲线的基线比较稳定。所用标本通常取1.5 cm 左右一段.两端用线结扎,以便固定于浴槽中。如果要分别观察肠管纵行肌或环行肌的运动,可将肠管沿其长轴剖开,取一条肌片,两端扎线固定,即可记录其纵行肌的活动。若要观察环行肌的运动，则要将肠管纵行切开后，作S形交互剪开,两端扎线固定牵张即成（图1）。
2. 胆囊标本的制备如果用狗的胆囊，可截取4 mm 宽2 cm长的全层肌片。兔或豚鼠的胆囊较小，取材时常与胆管一起摘下。兔的胆囊可沿其长轴切开分成两半；豚鼠的则可以用整个胆囊或取其半个进行实验。
3. 胆管标本的制备通常取狗的胆总管，将相边的十二肠组织切除留下乳头及胆道未端的括约肌组织。
4. 胃肌条如图 2 所示，可按肌肉纤维的走形取材。
注意事项：
1. 操作时动作要轻柔，冲洗标本时不宜采用高压，以免组织挛缩。
2. 实验所用的营养液应视不同组织而不同。兔的肠管宜用蒂罗德溶液，胃肌和胆囊片用克氏液较好。
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