1、预先培养材料细胞,并处理准备实验用在载玻片,盖玻片。
2、是眼前配置0.2%的常熔点琼脂糖凝胶,将溶液放入60摄氏度水浴中,每个载玻片放入溶液中3S,然后取出。将此载玻片水平放进37摄氏度温箱中,大于4h,即可使用。
3、取处于对数期,生长良好的MCF-7细胞,至于不同剂量的UV下照射一段时间,若想观察细胞的DNA损伤修复情况,还可将部分细胞在培养箱中培养一段时间。可设置不同时间梯度来做对照实验。
4、细胞消化后,离心富集,并用PBS液洗涤2-3次,清洗过程中要注意细胞要置于冰盒中,以抑制DNA损伤修复系统的持续作用,吹打细胞悬液不要过于激烈,以免细胞进一步受到机械损伤。最后用PBS液将其密度调整为1*106-2*106个细胞/m.l
5、制片:在载玻片两端用搭桥法放置盖片,两搭桥盖片间宽度为1cm,将细胞悬液与配置好的1%的低熔点琼脂糖(LMP)以1:1的比例在小离心管内混匀;在桥面盖片和载玻片间灌入约100ul细胞与胶的混合液,置于4℃。
6、胶凝固20min后,小心从载玻片一侧抽取下各张搭桥盖片,抽取过程中注意保持胶面平整。
7、裂解:将载玻片移入裂解槽,注入裂解液,浸没玻片,4℃避光裂解1.5-2h。
8、水洗:将载玻片移入新的裂解槽,注入三蒸水浸没玻片,4摄氏度水洗3次,每次5min。
9、解旋:将载玻片移入新的裂解槽,注入电泳缓冲液,浸没玻片,4摄氏度解旋20min。
10、电泳:将载片移入电泳槽,调节电泳槽两端电压为20V,200mA,4摄氏度,电泳20min。
11、中和:将载玻片移入新的裂解槽,注入中和液,浸没玻片,4摄氏度中和三次,每次5min.
12、梯度脱水:将载玻片移入新的裂解槽,进行梯度乙醇脱水(80%、100%),每个梯度脱水5min。
13、待载玻片室温干燥后,每片滴加PI(20ug/ml)20ul,再覆盖盖玻片,避光染色20min,注意盖片下不要产生气泡。
14、荧光显微镜下观察、采图,每份样品随机拍摄50个DNA受损细胞图像,还可用CASP彗星专用数据分析软件进行数据分析。