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免疫血清制备方法

点击次数:  更新时间:2018/7/17 10:35:39  
一、原理
 
具有免疫原性的抗原可刺激机体相应B细胞增殖、分化形成浆细胞并分泌特异性抗体。由于抗原分子表面的不同决定簇为不同特异性的B细胞克隆所识别,因此由某一抗原刺激机体后产生的抗体,实际上为针对该抗原分子表面不同决定簇的抗体混合物(即多克隆抗体)。另外,抗体的产生具有回忆应答的规律性,表现为初次免疫注射与再次免疫注射后的抗体应答特点截然不同。这是由于记忆性B细胞参与再次应答所致。
 
二、免疫方法
 
根据抗原的性质不同而异。下面以制备家兔抗人IgG免疫血清为例作具体说明。
 
1.用剪刀剪去家兔两后脚掌的部分兔毛,以酒精及碘酒消毒皮肤;
 
2.第一次免疫:用2ml注射器吸取弗氏完全佐剂(FCA)乳化的抗原(人IgG)下称FCA-IgG)液1ml,每侧脚掌皮下各注入0.5ml。
 
3.第二次免疫:间隔10-14天后,于两侧窝及鼠蹊部肿大的淋巴结内注入FCA-IgG,每个淋巴结注0.1ml,其余注入淋巴结附近皮下共1ml。如淋巴结未肿大或肿大不明显时,直接注入两侧窝及鼠蹊部皮下。
 
4.间隔7-10天后,从耳静脉采血0.5~1.0ml,分离血清,以双相琼脂扩散试验测定免疫血清的抗体效价(即试血)。效价至少应达到1∶16以上时才能放血。
 
5.若效价未达到要求,可用不加佐剂的抗原液(人IgG)耳静脉内注射免疫。即于1周内注射3次,分别为0.1、0.3、0.5ml。间隔1周再试血。如效价达到要求应立即放血。另外,也可在第2次免疫后,以弗氏不完全佐剂(FIA)乳化的抗原(人IgG)(简称FIA-IgG)再免疫1-2次。注射部位、剂量和间隔均同第2次,再试血测抗体效价,如效价达到要求立即放血。
 
三、放血
 
(一) 心脏采用血法
 
1.家兔仰面,四肢缚于动物固定架上(或由助手抓住四肢固定);
 
2.剪去左胸部兔毛,消毒皮肤;
 
3.用左姆指摸到胸骨剑突处,食指及中指放在右胸处轻轻向左推心脏,并使心脏固定于左胸侧位置。然后,以左拇指触摸心脏搏动最强的部位;
 
4.用50ml注射器(连接16号针头),倾针45°角度,对准心搏最强处刺入心脏抽血致死;
 
5.将抽取的血液立即注入无菌三角烧瓶中,待凝固后分离血清。
 
(二) 颈动脉放血法
 
1.家兔仰卧同上固定。头部略放低以暴露颈部。剃毛及消毒皮肤;
 
2.沿颈部中线切开皮肤约10cm,分离皮下组织,直至暴露出气管两侧的胸锁乳突肌;
 
3.分离胸锁乳突肌与气管间的颈三角区疏松组织,暴露出颈总动脉后使之游离;
 
4.于动脉下套入两根黑丝线,分别置于远心及近心端。结扎远心端的丝线。近心端的动脉用血管夹夹住;
 
5.用尖头小剪刀在两根丝线间的动脉璧上剪一小口,插入塑料放血管。再将近心端的丝线结扎固定于放血管上,以防放血管滑脱;
 
6.松开血管夹,使血液流入灭菌三角烧瓶中。一般一只家兔可放血80~100ml。
 
四、分离血清
 
将三角烧瓶的血置37℃温箱1小时,再置4℃冰箱内3~4小时。待血液凝固血块收缩后,用毛细滴管吸取血清。于3000rpm离心15分钟,取上清加入防腐剂(0.01%硫柳汞或0.02%叠氮钠,最终浓度),分装后置4℃冰箱中保存备用。


五、结果鉴定
 
以双相琼脂扩散试验测定所获免疫血清的抗体效价,并用琼指免疫电泳鉴定免疫血清中抗体的质量,应产生单一的沉淀弧线。鉴定方法的具体步骤参见有关部分。
 
六、材料
 
(一) 动物:健康成年家兔,雄性,体重2~3公斤。
 
(二) 器材:剪刀、镊子、注射器(2ml、50ml)附针头(9号、6号)、称量瓶(10ml)、量筒、动物固定架、灭菌三角烧瓶(200ml)、手术器械一套、血管夹、黑丝线、塑料放血管等。
 
(三) 试剂
 
1.灭菌生理盐水;
 
2.纯化人IgG(10mg/ml);
 
3.消毒酒精及碘酒;
 
4.羊毛脂;
 
5.石蜡油;
 
6.活卡价苗(BCG)(75mg/ml);
 
7.弗氏不完全佐剂(FIA)制备:称羊毛脂10克,逐滴加入优质石蜡油40ml,边滴边研磨,分装于疫苗瓶中(每瓶10ml),高压灭菌(8磅20分钟)后保存备用。
 
8.弗氏完全佐剂乳化抗原(FCA-IgG)的制备:将FIA予温(60℃30分钟),吸取3ml于研钵中,逐滴加入活BCG(75mg/ml)0.5ml及纯化人IgG2.5ml(2.4mg/ml)牨_滴入边研磨直至形成均一性的乳状液,取1滴滴于冷水面上不散开为合格。
 
七、注意事项
 
1.免疫用实验动物的抗体反应性个体差异性较大,因此免疫时至少应选用两只以上动物。另外,不能使用妊娠动物。
 
2.免疫用的抗原必须经FCA或FIA充分乳化后才能注射,否则将明显影响抗原的免疫效果。上述制备乳化抗原的方法较费时、费力。采用H-81微型振荡混合器法或三腔管研磨法制备。前者是将抗原液与佐剂按比例混合后,置于混合器上使之剧烈振荡(频率2900转/分,振幅6mm);后者是将免疫用的佐剂和抗原液按比例混合后,吸入注射器内再将注射器连接于三腔管上反复抽吸研磨。这两种方法约1小时即可使抗原充分乳化。
 
3.佐剂一方面可提高特异性免疫反应的效果获得高效价的免疫血清,但若抗原不纯时,可使抗原中极微量的污染物(0.005mgN)产生抗体,以致导致免疫血清的纯度受到影响。另外,有些实验动物种系对BCG过敏,尤其是豚鼠其次是家兔,当再次注射完全佐剂时,可以引起变态反应而导致免疫失败。为此,第二次免疫注射时应减少佐剂中BCG的含量或改用不完全佐剂,以减少和防止变态反应的发生。
 
4.抗原的剂量决定于抗原的种类。对免疫原性强的抗原剂量应相别较少,免疫原性弱的抗原剂量可相对较多。抗原的用量一般以体重计算。在使用佐剂的情况下,一次注入的总剂量以0.5mg/kg体重为宜。如不加佐剂时剂量可加大10倍。另外,免疫周期长者可少量多次注射,免疫周期短者可较大量少次注射。
 
5.免疫方法上也可采用多点注射法免疫动物。即于家兔脊柱两旁选4-6点皮下注射,同时于两侧肩部(或臂部)和鼠蹊部各注一处。每点注0.2ml,间隔2周后再于上述部位选不同点同上注射,也可产生高效价的免疫血清。

本文转载自丁香通