实验原理:
限制性内切酶可识别特定位点并切割DNA产生粘性末端或平端的外源片段,经DNA的纯化处理后用于连接反应;选择克隆载体pUC18多克隆位点上相应的限制性内切酶切割,并用碱性磷酸酶处理防止载体自连;在连接酶的作用下将外源片段连接到载体上,实现外源片段的克隆。
实验步骤:
1. 载体pUC18和外源DNA片段的限制性酶切:
50 μl反应体系,用1.5ml tube,冰上操作)
DNA 30 μl
R.E 1 μl
10×buffer 5 μl
ddH2O 14 μl
外源片段酶切产物和5 μl 37 ℃反应1hr,分别取8 μl PUC18酶切产物于1.0%凝胶检测酶切是否完全;按2-5步纯化、回收DNA
2. 加入ddH2O 150 (扩大体积),加入等体积氯仿/异戊醇(24:1),颠倒混匀,12000 g离心10 min;
3. 吸取上清,加1/10体积3 M NaAc和两倍体积无水乙醇,-20 ℃放置15分钟以上;
4. 12000 g 4 ℃冷冻离心15分钟;
5. ddH2O(1.5 ml ddH2O(0.5 ml tube中),PUC18溶于20 μl 倒去上清,用75%乙醇浸洗沉淀,风干后外源DNA溶于10 tube中);
6. 按以下反应去除载体PUC18的5’磷酸基团,50 ℃反应30 min 以上
DNA 20 μl
CIAP(TaKaRa) 0.5 μl
buffer 4.0 ′10 μl
ddH2O 15.5 μl
7. 70 ℃水浴10 min, 使CIAP失活;
8. 按2-5步纯化载体,溶于10 μl ddH2O;
9. 连接反应
DNA 10 μl
pUC18 2.5 μl
buffer 1.5 ′5 μl
mT4 ligase 3 U/μl
16 ℃水浴过夜
10. 转化大肠杆菌感受态细胞
11. 转化子的鉴定
本文转载自丁香通