实验流程
1、配液
(1)2×HBS 1.63g NaCl
1.19g Hepes
0.023g Na2 PO4 、2H2 O
加水至100ml pH7.1过滤,4℃保存
(2)2mmol/L CaCl2 过滤除菌
(3)TE:0.1mmol/L EDTA
1mmol/L Tris-HCL PH8.0
(4)G418(新霉素G418)液:1g G418溶于1mmol/L Hepes液中,加H2O至10mL过滤除菌4℃保存。
(5)G418选择培养基:用含10%胎牛血清的DMEM培养液配制G418,G418浓度为200~800mg/L
注意:对受体细胞先做预试验,选用浓度为在10~14天内能杀死细胞50%以上的最低浓度。
2、操作步骤:
(1)供体DNA 制备:方法按前介绍的DNA 提取法提取,溶于TE中,40mg/L。
(2)受体细胞的培养:研究癌基因转移应选择不含人类Alu序列的动物细胞系作为受体细胞。如小鼠NIH3T3胚成纤维细胞系等,该细胞有一定自发转化倾向,一般在转染前一天接种细胞,接种密度为2×104 /cm2 ,用含10%胎牛血清的DMEM液,37℃、5%CO2 培养,待细胞占50~70%瓶底面积时,用于转染试验。
(3)DNA -磷酸钙沉淀物的制备
①将供体细胞DNA 和PSV2-neo质粒载体DNA 用TE配制成40mg/L的DNA 溶液,同时向供体细胞DNA 液200μl中加入带基因neo质粒DNA 液(20mg/L)220μl和2×HBS 250μl(PSV2-neo为1~2mg/L的使用量)。
②取500μl上述DNA 溶液加入硅化试管中,缓慢加入3.1ml、2mol/L CaCl2 混匀30秒。
③然后立即混旋,室温下静置30分钟,待溶液轻度混浊后,吹打后即用于转染受体细胞。
(4)转染受体细胞
①将处于对数生长期已占瓶底50~70%的受体细胞,在转染前4小时更换一次新鲜培养基,每瓶5ml(25ml培养瓶)。
②吸取0.5ml DNA -磷酸钙沉淀,加入含5ml培养液的细胞瓶中摇匀。
③置37℃ 5% CO2 培养24h或更长,使细胞充分吸入DNA -磷酸钙结晶颗粒。
④更换新鲜培养基,继续培养24小时,诱导转染基因的表达。