DCFH-DA本身没有荧光,可以自由穿过细胞膜,进入细胞内后,可以被细胞内的酯酶水解生成DCFH。而DCFH不能通透细胞膜,从而使探针很容易被装载到细胞内。细胞内的活性氧可以氧化无荧光的DCFH生成有荧光的DCF。检测DCF的荧光就可以知道细胞内活性氧的水平。
一. 实验材料及试剂
培养板、酒精灯、移液枪、CO2培养箱、流式细胞仪、荧光显微镜等;DCFH-DA、PBS、HREC、20,70-二氯二荧光素二乙酸盐(H2DCFDA; Molecular Probes)、MFL等。
二、实验内容
细胞内ROS检测:按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA,使终浓度为10微摩尔/升。去除四组细胞培养液,加入适当体积稀释好的DCFH-DA。加入的体积以能充分覆盖住细胞为宜,通常对于六孔板的一个孔加入稀释好的DCFH-DA不少于1ml,37℃细胞培养箱内孵育20min,用无血清的培养液洗涤细胞三次,以充分去除未进入细胞的,使用激发488nm波长,525nm发射波长,用荧光显微镜和流式细胞仪检测。
细胞线粒体内检测:去除细胞培养液,培养的细胞通过20,70-二氯二荧光素二乙酸盐(H2DCFDA; Molecular Probes)检测ROS产生和线粒体特异性染料(MitoFLuor Red589; MFL;分子探针)对线粒体染色。 MFL在线粒体中累积而不管线粒体膜电位的变化,MFL发射波长是622nm,发射波长为525nm,在不同时间用PBS冲洗HREC。 将H2DCFDA和MFL分别加入以终浓度为2mM和500nM加入到不含酚红的培养基中后,将细胞在37℃下孵育45分钟,然后用新鲜的预热培养基洗涤两次,并在激光扫描共焦显微镜(LSM 510; Zeiss,Oberkochen,德国)下观察。 H2DCFDA的绿色荧光在488nm激发,MFL的红色荧光在588nm激发。 使用Zeiss软件计算每平方毫米细胞面积的平均荧光强度。
三、注意事项
1、探针装载后,一定要洗净残余的未进入细胞内的探针,否则会导致背景较高。
2、探针装载完毕并洗净残余探针后,可以进行激发波长的扫描和发射波长的扫描,以确认探针的装载情况是否良好。
3、尽量缩短探针装载后到测定所用的时间(刺激时间除外),以减少各种可能的误差。
4、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
5、对不同的细胞和组织,应选择合适的孵育时间和浓度,以观察ROS的变化。